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      產(chǎn)品名稱:

      豬瘟/高致病性豬藍(lán)耳病病毒(CSFV/PRRSV-HP)熒光探針PCR核酸檢測(cè)試劑盒

      產(chǎn)品型號(hào): 產(chǎn)品時(shí)間: 2023-07-05
      豬瘟/藍(lán)耳CSFV/PRRSV-HP熒光PCR檢測(cè)試劑盒根據(jù)豬瘟/藍(lán)耳CSFV/PRRSV-HP基因組設(shè)計(jì)特異性引物和探針,用熒光 PCR 技術(shù)對(duì)核酸進(jìn)行體外擴(kuò)增檢測(cè),用于臨床上對(duì)可疑感染者的病原學(xué)診斷。本試劑盒適用于檢測(cè)分泌物、血液、脾臟、扁桃體、腎臟和淋巴結(jié)等樣本中的豬瘟/藍(lán)耳CSFV/PRRSV-HP。

      產(chǎn)品概述

      豬瘟/藍(lán)耳CSFV/PRRSV-HP熒光PCR檢測(cè)試劑盒說明書

      【產(chǎn)品名稱】

      通用名稱:豬瘟/高致病性豬藍(lán)耳病病毒(CSFV/PRRSV-HP)?核酸檢測(cè)試劑盒(實(shí)時(shí)熒光-PCR法)

      Name :Nucleic acid detection kit for swine fever / highly pathogenic porcine reproductive and respiratory syndrome virus (CSFV/PRRSV-HP) (real-time fluorescent -PCR)

      【包裝規(guī)格】48T/盒

      【預(yù)期用途】

      豬瘟/高致病性豬藍(lán)耳病病毒(CSFV/PRRSV-HP)?感染引起的豬急性、熱性、高度接觸性傳染病。其特征為高熱,網(wǎng)狀內(nèi)皮系統(tǒng)出血,死亡率高。家養(yǎng)豬和野豬都可以被感染,而且不分品種和年齡。

      本試劑盒適用于檢測(cè)分泌物、血液、脾臟、扁桃體、腎臟和淋巴結(jié)等樣本中的豬瘟/高致病性豬藍(lán)耳病病毒(CSFV/PRRSV-HP)?,用于豬瘟/高致病性豬藍(lán)耳病病毒(CSFV/PRRSV-HP)?感染的輔助診斷。

      【檢驗(yàn)原理】

      本試劑盒根據(jù)豬瘟/高致病性豬藍(lán)耳病病毒(CSFV/PRRSV-HP)??基因組設(shè)計(jì)特異性引物和探針,用熒光 PCR 技術(shù)對(duì)核酸進(jìn)行體外擴(kuò)增檢測(cè),用于臨床上對(duì)可疑感染者的病原學(xué)診斷。

      【試劑組成】

      名 稱 規(guī) 格

      核酸提取液 1.5mL×2 管

      酶液 50μL×1 管

      ASFV 反應(yīng)液 1.0mL×1 管

      ASFV 陽性質(zhì)控品 50μL×1 管

      陰性質(zhì)控品 250μL×1 管

      注:

      1)不同批號(hào)試劑不能混用。

      2)試劑盒內(nèi)各試劑組份足夠包裝規(guī)格所標(biāo)示的檢測(cè)次數(shù)。

      【儲(chǔ)存條件及有效期】

      -20℃±5℃,避光保存、運(yùn)輸、反復(fù)凍融少于 7 次,有效期 12 個(gè)月。

      【適用儀器】

      ABI 、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測(cè)儀。

      【標(biāo)本采集】

      病死或撲殺豬,取分泌物、血液、脾臟、扁桃體、腎臟和淋巴結(jié)等

      【保存和運(yùn)輸】

      上述標(biāo)本短期內(nèi)可保存于-20℃,長期保存可置-70℃,但不能超過 6 個(gè)月,標(biāo)本運(yùn)送應(yīng)采用 2~8℃冰袋運(yùn)輸,嚴(yán)禁反復(fù)凍融。

      【使用方法】

      1.樣品處理(樣本處理區(qū))

      1.1樣本前處理

      組織樣品:每份組織分別從 3 個(gè)不同的位置稱取樣品約 1g,手術(shù)剪剪碎混勻后取

      0.5g 于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理鹽水后繼續(xù)研磨,待勻漿后轉(zhuǎn)至 1.5mL 滅菌離心管中,8000rpm 離心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中;全血樣本:待血凝固后,取血清 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中。

      1.2DNA 提取

      1)對(duì)上述處理好的標(biāo)本加入 50μL 核酸提取液,100℃恒溫處理 10min,13,000

      rpm 離心 5min,取上清液轉(zhuǎn)移至新的 1.5mL EP 管,-20℃保存;

      2)DNA 的提取也可以采用上海晅科生物科技有限公司生產(chǎn)的 DNA 提取試劑盒

      (離心柱提取法),請(qǐng)嚴(yán)格按照試劑盒說明書進(jìn)行操作。

      2.試劑配制(試劑準(zhǔn)備區(qū))

      根據(jù)待檢測(cè)樣本總數(shù),設(shè)所需要的 PCR 反應(yīng)管管數(shù)為 N(N=樣本數(shù)+1 管陰性對(duì)照+1 管陽性對(duì)照;樣品每滿 7 份,多配制 1 份),每測(cè)試反應(yīng)體系配制如下表:

      試劑 ASFV 反應(yīng)液 酶液

      用量(樣本數(shù)為 N) 20μL 1μL

      將混合好的測(cè)試反應(yīng)液分裝到 PCR 反應(yīng)管中,21uL/管。

      3.加樣(樣本處理區(qū))

       

      將步驟 1 提取的 DNA、陽性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品各取 4μL,分別加入相應(yīng)的反應(yīng)管中,蓋好管蓋,混勻,短暫離心。

      4.PCR 擴(kuò)增(核酸擴(kuò)增區(qū))

      4.1將待檢測(cè)反應(yīng)管置于熒光定量 PCR 儀反應(yīng)槽內(nèi);

      4.2設(shè)置好通道、樣品信息,反應(yīng)體系設(shè)置為 25μL;

      熒光通道選擇: 檢測(cè)通道(Reporter Dye)FAM, 淬滅通道(Quencher Dye)

      NONE,ABI 系列儀器請(qǐng)勿選擇 ROX 參比熒光,選擇 None 即可。

      4.3推薦循環(huán)參數(shù)設(shè)置:

      步驟 循環(huán)數(shù) 溫度 時(shí)間 收集熒光信號(hào)

      1 1 cycle 95℃ 10min 否

      2 40 cycles 94℃ 15sec 否

      55℃ 30sec 是

      5.結(jié)果分析判定

      5.1結(jié)果分析條件設(shè)定

      設(shè)置 Baseline 和 Threshold:一般直接按機(jī)器自動(dòng)分析的結(jié)果分析,當(dāng)曲線出現(xiàn)整體傾斜時(shí),根據(jù)分析后圖像調(diào)節(jié) Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范圍內(nèi)調(diào)節(jié))、stop 值(一般可在 5~20 范圍內(nèi)調(diào)節(jié)),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖動(dòng)閾值線至高于陰性對(duì)照),重新分析結(jié)果。

      5.2結(jié)果判斷

      陽性:檢測(cè)通道 Ct 值≤35.0,且曲線有明顯的指數(shù)增長曲線。

      可疑:檢測(cè)通道 Ct 值>35.0,且出現(xiàn)明顯擴(kuò)增曲線的樣本建議重復(fù)試驗(yàn),重復(fù)試驗(yàn)結(jié)果出現(xiàn) Ct 值≤35.0 和明顯擴(kuò)增曲線者為陽性,否則為陰性。

      陰性:樣本檢測(cè)結(jié)果無 Ct 值且無明顯的擴(kuò)增曲線。

      6.檢測(cè)方法的局限性

      樣本檢測(cè)結(jié)果不樣本收集、處理、運(yùn)送以及保存質(zhì)量有關(guān);

      樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會(huì)出現(xiàn)假陽性結(jié)果;

      陽性對(duì)照、擴(kuò)增產(chǎn)物泄漏,會(huì)導(dǎo)致假陽性結(jié)果;

      病原體在流行過程中基因突變、重組,會(huì)導(dǎo)致假陰性結(jié)果;

      不同的提取方法存在提取效率差異,會(huì)導(dǎo)致假陰性結(jié)果;

      試劑運(yùn)輸,保存不當(dāng)或試劑配制不準(zhǔn)確引起的試劑檢測(cè)效能下降,出現(xiàn)假陰性或定量檢測(cè)不準(zhǔn)確的結(jié)果;

      本檢測(cè)結(jié)果僅供參考,如須確診請(qǐng)結(jié)合臨床癥狀以及其他檢測(cè)手段。

      7.質(zhì)控標(biāo)準(zhǔn)

      陰性質(zhì)控品:無明顯擴(kuò)增曲線或無 Ct 值顯示;

      陽性質(zhì)控品:擴(kuò)增曲線有明顯指數(shù)生長期,且 Ct 值≤32; 以上條件應(yīng)同時(shí)滿足,否則實(shí)驗(yàn)視為無效。

      【注意事項(xiàng)】

      所有操作嚴(yán)格按照說明書進(jìn)行;

      試劑盒內(nèi)各種組分使用前應(yīng)自然融化,*混勻幵短暫離心;

      反應(yīng)液應(yīng)避光保存;

      反應(yīng)中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;

      使用一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)與用工作服;

      樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區(qū)進(jìn)行,以免交叉污染;

      實(shí)驗(yàn)完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺(tái)和移液器;

      試劑盒里所有物品應(yīng)視為污染物對(duì)待,幵按照《微生物生物醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室生物安全通則》進(jìn)行處理。

      【參考文獻(xiàn)】

      [1]國家質(zhì)量監(jiān)督檢驗(yàn)檢疫總局. SN/T 1559-2010 非洲豬瘟檢疫技術(shù)規(guī)范[S].

      [2]黃萍, 肖家勇, 歐陽振宇. 非洲豬瘟病毒實(shí)時(shí)熒光定量 PCR 檢測(cè)方法的建立[S]. 中國動(dòng)物檢疫, 2010.

      [3]董志珍, 侯艷梅, 趙祥平. 非洲豬瘟病毒實(shí)時(shí)熒光定量 PCR 檢測(cè)方法的建立[S]. 中國獸醫(yī)雜志, 2009.

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      0331豬瘟病毒疫苗株(HCLV)核酸檢測(cè)試劑盒(RT-PCR熒光探48T
      0321豬瘟病毒野毒株(CSFV-W)核酸檢測(cè)試劑盒(RT-PCR熒48T
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      0231豬藍(lán)耳病病毒經(jīng)典型(PRRSV-C)核酸檢測(cè)試劑盒(RT-P48T
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      0131口蹄疫病毒O型(FMDV-O)核酸檢測(cè)試劑盒(RT-PCR熒48T

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